Bio-Rad 1652092 Biorad 0.2cm間距電擊杯用戶指南

Bio-Rad 1652092 Biorad 0.2cm間距電擊杯用戶指南

——精準電轉化，助力基因編輯與(yu) 細胞工程

一、產品概述

Bio-Rad 1652092 Biorad 0.2cm間距電擊杯（MicroPulser Electroporation Cuvettes）是專(zhuan) 為(wei) 高場強電穿孔設計的實驗室耗材，適用於(yu) 酵母、細菌及其他真核細胞的基因導入與(yu) 編輯。其核心優(you) 勢包括高轉化效率、無菌保障及結構穩定性，廣泛應用於(yu) 分子生物學、合成生物學及藥物研發領域。

二、技術參數

三、核心功能與優勢

1. 高轉化效率

• 窄間距設計：0.2 cm間距產(chan) 生高場強，顯著提升外源DNA/RNA的細胞攝取率。

• 精準公差控製：電極間距誤差極小，確保實驗結果的可重複性。

2. 無菌保障

• 淨室生產(chan) ：裝配、洗滌、加蓋、包裝全流程在淨室完成，避免汙染。

• Gamma射線滅菌：獨立包裝，開袋即用，無需額外滅菌步驟。

3. 結構穩定性

• 耐高壓聚碳酸酯：可承受電穿孔儀(yi) 的高電壓脈衝(chong) ，避免擊穿或泄漏。

• 無縫模製腔體(ti) ：避免滲漏，確保鋁板平行，保障脈衝(chong) 均勻性。

4. 操作便捷性

• 顏色編碼蓋帽：綠色標識0.2 cm間距，便於(yu) 快速區分不同規格電擊杯。

• 平滑電極表麵：11步蝕刻處理，確保脈衝(chong) 傳(chuan) 送一致性，減少細胞損傷(shang) 。

四、操作指南

（一）實驗前準備

1. 設備檢查

• 確認電穿孔儀(yi) （如Gene Pulser Xcell）與(yu) 電擊杯型號匹配。

• 檢查電擊杯包裝完整性，避免使用已開封或損壞的產(chan) 品。

2. 細胞處理

• 製備感受態細胞（如酵母、細菌），濃度建議為(wei) 1–10×10⁶細胞/mL。

• 加入目的DNA（如質粒），混勻後冰浴5分鍾。

3. 電擊杯預冷

• 將電擊杯插入冰中預冷5分鍾，減少電轉過程中的熱損傷(shang) 。

（二）電穿孔操作

1. 樣品加載

• 用200 μL槍頭（切除0.5 cm）將細胞-DNA混合物緩慢注入電擊杯，避免氣泡。

• 立即蓋上杯蓋，確保密封性。

2. 參數設置

• 酵母：電壓170 V，電容950 μF，電轉液100 μL。

• 細菌：電壓150 V，電容950 μF，電轉液100 μL。

• 哺乳動物細胞（需優(you) 化）：電壓80–160 V，電容800–1000 μF。

• 根據細胞類型選擇參數（示例）：

3. 電擊與(yu) 複蘇

• 將電擊杯放入電穿孔儀(yi) ，啟動脈衝(chong) 。

• 電擊後立即加入預冷培養(yang) 基，轉移至離心管中複蘇。

（三）實驗後處理

1. 電擊杯清潔

• 用去離子水或70%乙醇衝(chong) 洗內(nei) 腔，避免細胞碎片殘留。

• 重複使用可能導致轉化效率下降，建議單次使用後丟(diu) 棄。

2. 細胞培養(yang)

• 根據細胞類型選擇複蘇條件（如37℃培養(yang) 箱、抗生素篩選）。

• 孵育12–48小時後，檢測基因表達或編輯效率。

五、典型應用場景

1. 基因編輯

• CRISPR/Cas9：通過電穿孔將sgRNA與(yu) Cas9質粒導入酵母或細菌，實現基因敲除或敲入。

• 同源重組：結合供體(ti) DNA（donor DNA），進行高精度基因編輯。

2. 細胞工程

• 重組蛋白表達：將外源基因導入酵母或細菌，生產(chan) 治療性蛋白。

• 幹細胞轉染：優(you) 化參數後，用於(yu) 哺乳動物細胞的基因導入。

3. 合成生物學

• 代謝通路改造：通過電穿孔導入多基因質粒，構建高效代謝工程菌株。

六、注意事項

1. 無菌操作

• 電擊杯開蓋後需立即使用，避免暴露於(yu) 空氣中過久。

• 使用後需按製造商說明清潔消毒，防止交叉汙染。

2. 參數優(you) 化

• 不同細胞類型需調整電壓、電容及電轉液體(ti) 積。

• 建議參考Bio-Rad參數表或文獻進行優(you) 化。

3. 設備兼容性

• 確認電穿孔儀(yi) 支持0.2 cm間距電擊杯（如Gene Pulser係列）。

• 避免使用非兼容設備，以免損壞電擊杯或儀(yi) 器。

4. 儲(chu) 存條件

• 未開封電擊杯可室溫儲(chu) 存，避免高溫或潮濕環境。

• 已開封電擊杯需立即使用，或密封保存於(yu) 4℃。