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樣品製備環節：蛋白質未提取或降解（未加蛋白酶抑製劑）、樣品上樣量不足（低於(yu) 檢測下限，如目標蛋白含量＜1 pg）；
電泳環節：凝膠濃度不匹配（如檢測 20 kDa 小蛋白用 10% 凝膠，蛋白跑出色譜膠）、電泳時間過長（蛋白遷移至凝膠外）；
轉膜環節：轉膜方向反了（蛋白未轉移到膜上，仍留在凝膠中）、轉膜效率低（如 PVDF 膜未用甲醇激活，無法吸附蛋白）；
免疫反應環節：一抗與(yu) 目標蛋白不匹配（如用兔抗小鼠蛋白抗體(ti) 檢測人源樣本）、一抗濃度過低（如 1:10000 稀釋導致結合不足）、抗體(ti) 失效（反複凍融或過期）；
信號檢測環節：ECL 底物過期（發光效率下降）、成像時間過短（未捕獲到弱信號）。
樣品製備排查：
用 BCA 法（如羅氏 BCA Protein Assay Kit）檢測蛋白質濃度，確保上樣量≥20 μg（或目標蛋白含量≥1 pg）；
提取時添加新鮮的蛋白酶抑製劑（如羅氏 Complete™ Protease Inhibitor Cocktail，含 6 種抑製劑，可抑製絲(si) 氨酸 / 半胱氨酸蛋白酶等），避免蛋白質降解；
電泳與(yu) 轉膜驗證：
根據目標蛋白分子量選擇凝膠濃度（參考：10-50 kDa 用 15% 凝膠，50-100 kDa 用 10% 凝膠，100-200 kDa 用 8% 凝膠），電泳後用考馬斯亮藍染色凝膠，確認蛋白已進入凝膠且未跑穿；
轉膜前用甲醇浸泡 PVDF 膜 10 秒（激活羥基），轉膜後用麗(li) 春紅 S 染色膜，觀察是否有蛋白質條帶（若有則證明轉膜成功，無則檢查轉膜方向或緩衝(chong) 液）；
免疫反應優(you) 化：
核對一抗說明書(shu) ，確認種屬匹配（如檢測人 EGFR 需用抗人 EGFR 抗體(ti) ，而非抗小鼠 EGFR），優(you) 先選擇經過驗證的單克隆抗體(ti) （如羅氏 Anti-EGFR Monoclonal Antibody，經 WB 驗證，特異性＞99%）；
調整一抗濃度（推薦起始濃度 1:1000-1:5000），4℃孵育過夜（延長結合時間），洗膜時用 TBST 緩衝(chong) 液（含 0.1% Tween-20）充分洗滌（3 次 ×15 分鍾），避免未結合抗體(ti) 殘留；
信號檢測保障：
使用新鮮的 ECL 底物（如羅氏 Lumi-Light™ Plus Substrate，發光時間長達 8 小時），先進行 5 分鍾預曝光，若信號弱則延長至 10-30 分鍾，或使用高靈敏度成像儀(yi) （如羅氏 ChemiDoc™ MP Imaging System，檢測下限達 0.1 pg）。
樣品製備：蛋白質未充分變性（如 SDS 上樣緩衝(chong) 液未加 β- 巰基乙醇，或加熱時間不足）、樣品中含大量雜質（如鹽濃度過高，導致電泳時蛋白遷移不均）；
電泳環節：凝膠聚合不均（APS 或 TEMED 添加量不足，導致凝膠孔徑不一致）、電泳緩衝(chong) 液反複使用（離子濃度下降，導電性減弱）；
轉膜環節：轉膜電流過大（膜發熱導致蛋白擴散）、凝膠與(yu) 膜之間有氣泡（局部轉膜不，條帶斷裂）。
樣品處理優(you) 化：
確保上樣緩衝(chong) 液中 β- 巰基乙醇終濃度為(wei) 5%，95℃加熱 10 分鍾（而非 5 分鍾），使蛋白質變性（線性化）；
若樣品鹽濃度高（如從(cong) 高鹽緩衝(chong) 液中提取），用透析袋（截留分子量 3 kDa）透析 24 小時（換液 3 次），或使用脫鹽柱（如羅氏 HiTrap™ Desalting Columns）去除鹽分；
電泳條件控製：
使用新鮮配製的電泳緩衝(chong) 液（Tris - 甘氨酸 - SDS 緩衝(chong) 液，pH 8.3），避免反複使用（建議使用次數≤3 次）；
選擇預製膠（如羅氏 ExcelGel™ SDS 預製膠，工廠標準化生產(chan) ，孔徑均勻性 CV 值＜5%），避免手動製膠導致的聚合不均；
轉膜操作規範：
采用恒壓轉膜（而非恒流），根據膜麵積調整電壓（如 7 cm×8 cm 膜用 25 V 轉膜 30 分鍾），轉膜時在冰浴中進行（避免膜發熱）；
鋪膜時用玻璃棒輕輕滾動，排除凝膠與(yu) 膜之間的氣泡（可在膜上滴加少量轉膜緩衝(chong) 液，幫助氣泡排出）。
蛋白質修飾影響：目標蛋白存在翻譯後修飾（如磷酸化、糖基化、泛素化），導致分子量增大（如未磷酸化的 ERK 分子量約 42 kDa，磷酸化後因電荷變化，遷移速度減慢，條帶偏移至 45 kDa 左右）；
電泳參數偏差：凝膠濃度錯誤（如檢測 40 kDa 蛋白用 15% 凝膠，而非 10%，導致蛋白遷移過快，條帶分子量偏小）、電泳電壓過高（遷移速度加快，條帶位置偏上）；
樣品降解：蛋白質部分降解（如提取後未及時檢測，導致 C 端或 N 端片段斷裂），出現 “小分子量雜帶"，誤判為(wei) 目標條帶。
修飾驗證：
若懷疑磷酸化修飾，可同時檢測磷酸化與(yu) 非磷酸化形式（如用羅氏 Anti-p-ERK 與(yu) Anti-ERK 抗體(ti) ，前者條帶偏移，後者為(wei) 標準分子量）；
若為(wei) 糖基化修飾，用糖苷酶（如 PNGase F）處理樣品（37℃孵育 1 小時），去除糖鏈後再電泳，觀察條帶是否恢複至預期分子量；
電泳參數校準：
嚴(yan) 格按照目標蛋白分子量選擇凝膠濃度（參考表 1），並使用蛋白分子量標準品（如羅氏 Precision Plus Protein™ Standards，含 10 種蛋白，分子量 10-250 kDa），每次實驗均上樣標準品，校準條帶位置；
控製電泳電壓（濃縮膠 80 V，分離膠 120 V），避免電壓過高（如 150 V）導致遷移速度異常；
降解防控：
蛋白質提取後立即進行電泳（或 - 80℃分裝保存，避免反複凍融），若需長期保存，添加蛋白酶抑製劑（如羅氏 Complete™ Mini EDTA-free，適合金屬蛋白酶抑製）。
目標蛋白分子量（kDa） | 推薦凝膠濃度（%） | 電泳時間（分離膠，120 V） |
10-50 | 15 | 40-50 分鍾 |
50-100 | 10 | 60-70 分鍾 |
100-200 | 8 | 80-90 分鍾 |
封閉不充分：封閉液選擇錯誤（如檢測磷酸化蛋白用脫脂牛奶，牛奶中內(nei) 源性磷酸酶與(yu) 抗體(ti) 交叉反應）、封閉時間過短（如室溫孵育 30 分鍾，覆蓋非特異性位點）；
抗體(ti) 非特異性結合：一抗濃度過高（如 1:500 稀釋，導致非特異性結合增多）、二抗與(yu) 膜或封閉液成分交叉反應（如用羊抗兔二抗檢測兔源封閉蛋白）；
試劑汙染：ECL 底物汙染（如混入雜質，導致非特異性發光）、膜被熒光物質汙染（如戴手套接觸膜，手套上的熒光劑殘留）。
封閉條件優(you) 化：
根據檢測目標選擇封閉液（參考表 2），如檢測磷酸化蛋白或生物素標記抗體(ti) ，優(you) 先用 3% BSA（如羅氏 Albumin from Bovine Serum，無內(nei) 源性磷酸酶與(yu) 生物素），避免用脫脂牛奶；
延長封閉時間（室溫 2 小時或 4℃過夜），封閉過程中持續搖床振蕩（50 rpm），確保封閉液均勻覆蓋膜表麵；
抗體(ti) 濃度調整：
降低一抗濃度（如從(cong) 1:500 調整為(wei) 1:2000），並進行梯度稀釋實驗（1:1000、1:2000、1:5000），選擇 “條帶清晰且背景低" 的最佳濃度；
選擇交叉反應率低的二抗（如羅氏 HRP-Conjugated Goat Anti-Rabbit IgG，經親(qin) 和純化，與(yu) 小鼠 IgG 交叉反應率＜0.5%），二抗濃度控製在 1:5000-1:10000；
汙染防控：
使用新鮮開封的 ECL 底物，避免反複使用（單次使用後丟(diu) 棄剩餘(yu) 底物）；
操作時戴無粉手套，避免用手直接接觸膜（可使用鑷子夾取膜邊緣），膜的存放環境避免熒光燈直射（防止熒光物質激發）。
抗體(ti) 特異性差：一抗為(wei) 多克隆抗體(ti) （識別多個(ge) 表位，與(yu) 同源蛋白交叉反應）、一抗與(yu) 樣品中其他蛋白有同源序列（如檢測 EGFR 時，與(yu) ERBB2 蛋白交叉反應）；
蛋白降解或聚合：樣品中目標蛋白部分降解（產(chan) 生小分子量片段，形成雜帶）、蛋白質聚合（如加熱不充分，形成二聚體(ti) / 三聚體(ti) ，出現大分子量雜帶）；
轉膜汙染：轉膜時凝膠中的蛋白轉移到膜的非預期區域（如相鄰泳道的蛋白擴散，形成橫向雜帶）。
抗體(ti) 選擇優(you) 化：
優(you) 先使用單克隆抗體(ti) （如羅氏 Anti-KRAS Monoclonal Antibody，僅(jin) 識別 KRAS 蛋白的特定表位，交叉反應率＜0.1%），避免使用多克隆抗體(ti) ；
查閱抗體(ti) 說明書(shu) ，確認是否有 WB 驗證數據（如是否標注 “僅(jin) 在 42 kDa 處出現單一條帶"），選擇經過同行評審的抗體(ti) ；
樣品處理改進：
提取後立即添加蛋白酶抑製劑（如羅氏 Complete™ Protease Inhibitor Cocktail），並在 - 80℃分裝（避免反複凍融導致降解）；
確保上樣緩衝(chong) 液中 SDS 濃度為(wei) 2%，95℃加熱 10 分鍾，使蛋白質解聚（避免二聚體(ti) 形成）；
轉膜與(yu) 電泳控製：
上樣時避免樣品溢出（每個(ge) 泳道上樣量不超過泳道體(ti) 積的 80%），電泳時使用新鮮緩衝(chong) 液，避免蛋白擴散；
轉膜後用麗(li) 春紅 S 染色，確認相鄰泳道無蛋白交叉汙染，若有則增加泳道間距或降低上樣量。
目標蛋白豐(feng) 度低：樣品中目標蛋白含量低於(yu) 檢測下限（如＜0.1 pg）、樣品上樣量不足（如僅(jin) 上樣 5 μg 蛋白）；
抗體(ti) 親(qin) 和力低：一抗與(yu) 目標蛋白的親(qin) 和力常數（KD）過大（如＞10⁻⁹ mol/L，結合能力弱）、二抗偶聯效率低（如酶與(yu) 抗體(ti) 的偶聯比例 DOL＜1，信號放大不足）；
檢測係統靈敏度低：ECL 底物發光效率低（如普通底物，而非增強型）、成像儀(yi) 檢測限高（如無法捕獲皮克級信號）。
樣品富集與(yu) 上樣優(you) 化：
若目標蛋白豐(feng) 度低（如血清中的細胞因子），使用免疫沉澱（IP）富集（如羅氏 Protein G Sepharose™ 4 Fast Flow，特異性結合抗體(ti) - 抗原複合物），富集後再進行 WB 實驗；
增加上樣量（如從(cong) 10 μg 增至 30 μg），但需注意避免過載（導致條帶飽和，影響定量）；
抗體(ti) 與(yu) 底物選擇：
選擇高親(qin) 和力一抗（如羅氏 Anti-p53 Antibody，KD=10⁻¹² mol/L，結合能力是普通抗體(ti) 的 1000 倍），二抗選擇高偶聯效率的產(chan) 品（如羅氏 HRP-Conjugated 二抗，DOL=2-3）；
使用增強型 ECL 底物（如羅氏 Lumi-Light™ Plus Substrate，發光強度是普通底物的 5 倍），延長曝光時間（如從(cong) 1 分鍾增至 10 分鍾）；
檢測儀(yi) 器升級：
使用高靈敏度成像儀(yi) （如羅氏 ChemiDoc™ MP Imaging System，配備高分辨率 CCD 相機，檢測下限達 0.1 pg），避免使用 X 光片（曝光時間固定，難以捕捉弱信號）。
操作不標準化：上樣量不一致（如手動加樣時，每孔體(ti) 積偏差＞1 μL）、孵育時間 / 溫度波動（如一次 4℃過夜，一次室溫 2 小時）；
試劑批次差異：不同批次的一抗親(qin) 和力不同（如多克隆抗體(ti) 製備過程中，批次間特異性差異）、ECL 底物發光效率波動（如不同批次的底物活性差異）；
儀(yi) 器未校準：成像儀(yi) 的灰度值檢測未校準（如每次實驗的曝光參數不同，導致灰度值無法比較）、分析軟件參數設置不一致（如閾值選擇不同）。
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