
梯度凝膠交聯劑優(you) 化:針對不同分子量蛋白分離需求,提供 4%-20%、8%-16% 等多種梯度凝膠。以 4%-20% 梯度凝膠為(wei) 例,交聯劑比例隨丙烯酰胺濃度動態調整 —— 低濃度區域(4%-8%)交聯劑占比 1.5%,形成較大孔徑,便於(yu) 大分子蛋白(>100 kDa)遷移;高濃度區域(16%-20%)交聯劑占比 2.0%,形成較小孔徑,實現小分子蛋白(<20 kDa)的精細分離。實驗數據顯示,該凝膠對 10 kDa-250 kDa 的蛋白 Marker 分離效果優(you) 異,條帶分辨率達 1.8(傳(chuan) 統自製凝膠分辨率 1.2),可清晰區分分子量差異僅(jin) 5 kDa 的蛋白(如 25 kDa 與(yu) 30 kDa 蛋白)。
均一凝膠孔徑控製:對於(yu) 10%、12% 等均一濃度凝膠,交聯劑比例固定為(wei) 1.6%,通過高精度混合設備確保丙烯酰胺與(yu) 交聯劑均勻混合,凝膠孔徑變異係數(CV)<3%,遠低於(yu) 傳(chuan) 統自製凝膠的 8%-12%。使用該凝膠分離重組 GFP 蛋白(27 kDa),同一樣本不同泳道的條帶遷移距離差異<0.5 mm,確保實驗重複性。
無邊緣效應設計:凝膠邊緣采用特殊密封工藝,避免聚合過程中水分蒸發導致的邊緣孔徑收縮,邊緣泳道與(yu) 中心泳道的蛋白遷移速率差異<2%,解決(jue) 了傳(chuan) 統凝膠邊緣條帶模糊、偏移的問題。
分離膠與(yu) 濃縮膠緩衝(chong) 體(ti) 係協同:分離膠采用 1.5 M Tris-HCl 緩衝(chong) 液(pH 8.8),濃縮膠采用 0.5 M Tris-HCl 緩衝(chong) 液(pH 6.8),通過高精度 pH 計(精度 ±0.01)實時監測,確保每批次凝膠的 pH 值偏差<0.05。緩衝(chong) 液中添加 0.1%(w/v)的 EDTA,螯合金屬離子(如 Ca²⁺、Mg²⁺),避免金屬離子與(yu) 蛋白結合影響遷移速率,尤其對金屬結合蛋白(如鐵蛋白)分離效果提升顯著。
堿性蛋白分離優(you) 化:對於(yu) 堿性蛋白(如溶菌酶,pI=11.0)分離,推出高 pH 緩衝(chong) 凝膠(分離膠 pH 9.5),通過調整 Tris-HCl 緩衝(chong) 液濃度至 1.8 M,增強緩衝(chong) 能力,避免電泳過程中 pH 值漂移。使用該凝膠分離溶菌酶(14.4 kDa),條帶對稱性較傳(chuan) 統凝膠提升 40%,無拖尾現象。
低溫聚合工藝:凝膠采用 4℃低溫聚合,延長聚合時間至 4 小時,避免高溫聚合導致的緩衝(chong) 液揮發與(yu) pH 變化,聚合完成後立即真空密封包裝,確保 pH 值在保質期內(nei) (12 個(ge) 月)穩定,無明顯漂移(ΔpH<0.03)。
防腐劑添加:凝膠中添加 0.02%(w/v)的疊氮鈉,抑製細菌與(yu) 真菌生長,避免凝膠儲(chu) 存過程中出現黴變(傳(chuan) 統自製凝膠室溫儲(chu) 存 3 天即易黴變),4℃條件下保質期長達 12 個(ge) 月,滿足長期實驗需求。
兼容多種電泳緩衝(chong) 液:可適配 Tris - 甘氨酸、Tris - 硼酸 - EDTA(TBE)、Tris - 乙酸(TAE)等多種電泳緩衝(chong) 液,無需更換凝膠類型即可實現不同蛋白的分離。例如,使用 TBE 緩衝(chong) 液分離核酸結合蛋白時,凝膠對蛋白的吸附率<5%,遠低於(yu) 傳(chuan) 統凝膠的 15%-20%。
適配轉膜與(yu) 染色流程:凝膠厚度精準控製為(wei) 1.0 mm 或 1.5 mm,與(yu) Bio-Rad 轉膜夾、染色盒適配,轉膜效率達 90% 以上(傳(chuan) 統自製凝膠轉膜效率 75%-85%);同時,凝膠不含影響染色的雜質(如未聚合丙烯酰胺),與(yu) 考馬斯亮藍、銀染、熒光染色等多種染色方法兼容,染色背景低(OD 值<0.1)。
樣本處理:將純化後的重組人胰島素樣本(20 μg)與(yu) 5×SDS 上樣緩衝(chong) 液混合,95℃變性 5 分鍾,同時準備蛋白 Marker(3 kDa-100 kDa)。
電泳操作:將 Mini-PROTEAN 凝膠裝入 Mini-PROTEAN Tetra 電泳槽,加入 Tris - 甘氨酸電泳緩衝(chong) 液,上樣後恒壓 80 V(濃縮膠)、120 V(分離膠)電泳,待溴酚藍指示劑到達凝膠底部停止。
染色與(yu) 結果判讀:凝膠經考馬斯亮藍快速染色液染色 20 分鍾,成像顯示重組人胰島素在 5.8 kDa 處呈現單一清晰條帶,無雜蛋白條帶(純度>99%),與(yu) 理論分子量一致;同一樣本重複上樣 3 次,條帶遷移距離 CV 值 = 2.1%,證明凝膠重複性優(you) 異。
樣本製備:提取 HepG2 細胞總蛋白,BCA 定量後調整濃度至 2 μg/μL,取 30 μg 樣本進行變性處理。
梯度電泳分離:使用 4%-20% 梯度凝膠,恒壓 100 V 電泳 120 分鍾,梯度凝膠的孔徑變化實現 10 kDa-200 kDa 蛋白的全覆蓋分離。
凝膠切割與(yu) 質譜分析:電泳後將凝膠按分子量範圍切割為(wei) 10 個(ge) 區域,每個(ge) 區域進行胰酶酶解,酶解產(chan) 物經 LC-MS/MS 分析,共鑒定到 2800 種蛋白,較傳(chuan) 統自製凝膠(鑒定 2200 種蛋白)提升 27%,低豐(feng) 度蛋白(如信號通路蛋白 AKT,56 kDa)的鑒定率顯著提升。
樣本預處理:取患者血清 100 μL,通過免疫沉澱法富集 CEA 蛋白,洗脫後獲得濃縮樣本(約 20 μL)。
電泳與(yu) 轉膜:使用 12% 凝膠進行電泳,隨後通過 Bio-Rad 濕轉係統將蛋白轉移至 PVDF 膜(200 mA,90 分鍾)。
免疫印跡檢測:轉膜後進行 Western Blot 檢測,結果顯示 CEA 蛋白條帶(180 kDa)清晰,無明顯背景幹擾,健康人血清樣本無該條帶,證明凝膠對微量蛋白的分離效果可靠,可滿足臨(lin) 床樣本分析需求。