——高效、緊湊的蛋白/核酸分離與(yu) 轉印一體(ti) 化解決(jue) 方案
一、係統核心特性與(yu) 創新設計
1.1 模塊化組件設計
電泳槽:
最大支持 10 cm × 10 cm 凝膠(2塊,厚度0.5-1.5 mm)
冷卻芯設計(溫升<5℃/小時,200V條件下)
轉印模塊:
半幹轉/濕轉雙模式切換
最大轉印效率:>90%(測試蛋白10-150 kDa)
1.2 關(guan) 鍵性能參數
參數1658033係統常規小型係統
最大電壓500 V300 V
運行時間(SDS-PAGE)35分鍾(200 V)50-60分鍾
轉印麵積20 cm²10-15 cm²
緩衝(chong) 液需求量300 mL(電泳)500 mL
1.3 適用研究場景
推薦應用:
✓ 快速蛋白篩查(如CRISPR編輯驗證)
✓ 低豐(feng) 度核酸檢測(Northern blot)
✓ 教學實驗室高通量操作
二、標準化操作流程
2.1 電泳步驟
複製
1. 凝膠安裝:
- 將預製膠卡入槽體(ti) ,加入1×Running Buffer
- 避免緩衝(chong) 液溢出(液麵超過電極1 cm)
2. 上樣:
- 使用10 μL上樣槍頭(最大上樣量25 μL/孔)
3. 運行:
- 初始電壓80 V(濃縮膠),進入分離膠後調至120-150 V
2.2 半幹轉印方案
步驟條件注意事項
膜/濾紙預處理浸漬轉印緩衝(chong) 液10秒避免氣泡滯留
"三明治"組裝負極→濾紙/膠/膜/濾紙→正極戴手套操作
轉印參數15 V, 30分鍾分子量>100 kDa需延長至45分鍾
三、性能優(you) 化與(yu) 問題排查
3.1 電泳質量評估
合格標準:
✓ 蛋白Marker條帶清晰(無彌散)
✓ 前沿指示劑(溴酚藍)呈直線遷移
3.2 轉印效率驗證
Ponceau S染色法:
複製
1. 轉印後膜用0.1% Ponceau S染色5分鍾
2. 脫色後觀察:
- 合格:所有目標條帶可見
- 失敗:高分子量蛋白缺失(需延長轉印時間)
3.3 常見問題診斷
現象可能原因解決(jue) 方案
條帶彎曲緩衝(chong) 離子強度不均新鮮配製Running Buffer
轉印後信號弱甲醇濃度過高(>20%)降低至10%甲醇
凝膠熔融電流過高/冷卻失效檢查冷卻循環係統
四、技術問答(Q&A)
Q1:能否用於(yu) 非變性蛋白電泳?
需改用 Native PAGE緩衝(chong) 液套裝(Cat. 1610738),並取消SDS
Q2:最小檢測蛋白量?
配合高敏發光底物(如Clarity Max)可檢測 0.5 pg/band
文檔優(you) 化建議:
插入 【電泳-轉印工作流程圖】 標注關(guan) 鍵參數
添加 緩衝(chong) 液配方二維碼(鏈接至Bio-Rad數據庫)
關(guan) 鍵步驟用 ⚠️警示框 強調(如"勿使用氯化鈉緩衝(chong) 液")